Pharmacological elimination of therapy-induced senescent cells minimiz的简体中文翻译

Pharmacological elimination of ther

Pharmacological elimination of therapy-induced senescent cells minimizes side effects of chemotherapy and prevents cancer recurrence in animals48. However, the feasibility of PCC1-mediated depletion of senescent cells from primary tumours to enhance the efficacy of anticancer treatments remains largely unknown. First, we chose to build tissue recombinants by admixing PSC27 cells with PC3 cells, which are a typical prostate cancer cell line of high malignancy, at a pre-optimized ratio (1:4)14. The cells were then subcutaneously implanted into the hind flank of mice with non-obese diabetes and severe combined immunodeficiency (NOD–SCID). Tumours of animals were measured at the end of an 8-week period, and tissues were acquired for pathological appraisal. Compared to tumours comprising PC3 cancer cells and naive PSC27 stromal cells, xenografts composed of PC3 cells and senescent PSC27 cells exhibited significantly increased volume, confirming the tumour growth-promoting effects of senescent cells (Extended Data Fig. 6a). To mimic clinical conditions, we experimentally designed a preclinical regimen incorporating genotoxic therapeutics and/or senolytics (Fig. 5a). Two weeks after subcutaneous implantation, when stable uptake of tumours in vivo was observed, a single dose of mitoxantrone (MIT, a chemotherapeutic drug) or placebo was delivered to animals on the 1st day of the 3rd, 5th and 7th weeks until the end of the 8-week regimen (Extended Data Fig. 6b). In contrast to the placebo-treated group, MIT administration remarkably delayed tumour growth, validating the efficacy of MIT as a chemotherapeutic agent (44.0% reduction in tumour size) (Fig. 5b). Notably, although administration of PCC1 itself did not cause tumour shrinkage, treatment with MIT followed by PCC1 delivery (at 20mg per kg via intraperitoneal (i.p.) injection 2 weeks after the first MIT dose and then delivered biweekly) remarkably enhanced tumour regression (55.2% reduction in tumour size compared with MIT alone; 74.9% reduction in tumour volume compared with the placebo treatment) (Fig. 5b). We next tested whether cellular senescence occurred in the tumour foci of these animals. Unsurprisingly, MIT administration induced the appearance of a large number of senescent cells in tumour tissue. However, delivery of PCC1 to these chemotherapytreated animals depleted the majority of senescent cells (Fig. 5c,d). Laser capture microdissection followed by transcript assays indicated significantly increased expression of SASP factors including IL6, CXCL8, SPINK1, WNT16B (also known as WNT16), GM-CSF (also known as CSF2), MMP3 and IL1A, a tendency accompanied by upregulation of the gene encoding the senescence marker p16INK4a in chemotherapy-treated animals (Fig. 5e and Extended Data Fig. 6c).
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治疗诱导的衰老细胞的药理学消除可<br>最大限度地减少化学疗法的副作用并防止<br>动物癌症复发。然而,PCC1 介导<br>的从原发性肿瘤中去除衰老细胞以提高<br>抗癌治疗效果的可行性仍然未知。<br>首先,我们选择通过以预先优化的比例 (1:4)14 将<br>PSC27 细胞与 PC3 细胞(一种典型<br>的高度恶性的前列腺癌细胞系)混合来构建组织重组体。<br>然后将细胞皮下植入<br>患有非肥胖糖尿病和严重联合免疫缺陷<br>(NOD-SCID)的小鼠的后胁部。动物的肿瘤在<br>8 周结束后,采集组织用于病理学<br>评估。与包含 PC3 癌细胞<br>和初始 PSC27 基质细胞的肿瘤相比,由 PC3 细胞<br>和衰老 PSC27 细胞组成的异种移植物表现出显着增加的体积,<br>证实了衰老细胞的肿瘤生长促进作用<br>(扩展数据图 6a)。<br>为了模拟临床条件,我们通过实验设计了一种<br>包含基因毒性治疗剂和/或<br>衰老清除剂的临床前方案(图 5a)。皮下植入两周后,<br>当观察到体内肿瘤的稳定摄取时,单剂量<br>的米托蒽醌(MIT,一种化疗药物)或安慰剂<br>在第 3、第 5 和第 7 周的第 1 天递送至动物<br>直至 8 周方案结束(扩展数据图 6b)。在<br>对比的是安慰剂组,MIT给药备注<br>巧妙地延迟肿瘤生长,验证MIT的功效作为<br>化疗剂(肿瘤大小减少44.0%)(图5b)。<br>值得注意的是,尽管施用 PCC1 本身不会导致<br>肿瘤缩小,但用 MIT 治疗后进行 PCC1 给药<br>(在<br>第一次 MIT 给药后 2 周通过腹膜内 (ip) 注射 20mg/kg ,然后每两周给药一次)显着增强了<br>肿瘤消退(55.2%)与<br>单独使用MIT相比,肿瘤体积减小;与MIT相比,肿瘤体积减小 74.9%<br>安慰剂治疗)(图 5b)。<br>我们接下来测试<br>了这些动物的肿瘤病灶中是否发生细胞衰老。不出所料,麻省理工学院的给药<br>诱导了<br>肿瘤组织中大量衰老细胞的出现。然而,将 PCC1 递送给这些接受化疗的<br>动物消耗了大部分衰老细胞(图 5c、d)。<br>激光捕获显微切割,随后转录物检测表明<br><br>显著增加的SASP因素,包括IL6,表达<br>CXCL8,SPINK1,WNT16B(也称为WNT16),GM-CSF(也<br>称为CSF2),MMP3和IL1A,伴随着的倾向<br>的上调编码衰老标志物 p16INK4a 的基因<br>接受化疗的动物(图 5e 和扩展数据图 6c)。
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药物消除治疗诱导的衰老细胞<br>减少化疗的副作用,防止癌症复发<br>动物的生殖力48。然而,PCC1的可行性<br>从原发性肿瘤中去除衰老细胞,以增强<br>抗癌治疗的疗效在很大程度上尚不清楚。<br>首先,我们选择通过混合来构建组织重组体<br>PSC27细胞与PC3细胞,这是一种典型的前列腺癌<br>高度恶性的细胞系,以预先优化的比例(1:4)14。这个<br>然后将细胞皮下移植到动物的后腹<br>非肥胖糖尿病和严重联合免疫缺陷小鼠<br>效率(NOD–SCID)。动物的肿瘤是在同一时间测量的<br>8周结束后,采集组织进行病理学检查<br>cal评估。与包含PC3癌细胞的肿瘤相比<br>和原始的PSC27基质细胞,由PC3细胞组成的异种移植物<br>衰老的PSC27细胞体积显著增加,<br>确认衰老细胞的促肿瘤生长作用<br>(扩展数据图6a)。<br>为了模拟临床情况,我们实验设计了一个<br>结合基因毒性疗法和/或<br>解衰老药物(图5a)。皮下植入两周后,<br>当观察到肿瘤在体内的稳定摄取时,单剂量<br>米托蒽醌(MIT,一种化疗药物)或安慰剂的剂量为<br>在第3周、第5周和第7周的第一天交付给动物<br>直到8周疗程结束(扩展数据图6b)。在里面<br>与安慰剂治疗组相比,麻省理工学院给药组<br>有效地延缓了肿瘤生长,验证了MIT作为<br>化疗药物(肿瘤大小减少44.0%)(图5b)。<br>值得注意的是,尽管PCC1本身的给药并未导致<br>肿瘤缩小,MIT治疗后PCC1输送<br>(试验后2周,通过腹腔注射(i.p.)以20mg/kg的速度进行<br>第一次给药,然后每两周给药)显著增强<br>肿瘤消退(与对照组相比,肿瘤大小减少55.2%)<br>仅麻省理工学院;与对照组相比,肿瘤体积减少74.9%<br>安慰剂治疗(图5b)。<br>接下来,我们测试了细胞是否发生衰老<br>这些动物的肿瘤病灶。毫不奇怪,麻省理工学院的管理者<br>电离作用诱导细胞出现大量的衰老细胞<br>肿瘤组织。然而,PCC1在这些化疗中的传递<br>经过处理的动物耗尽了大部分衰老细胞(图5c,d)。<br>激光捕获显微切割,然后进行转录分析<br>显著增加SASP因子的表达,包括IL6,<br>CXCL8、SPINK1、WNT16B(也称为WNT16)、GM-CSF(也称为<br>被称为CSF2)、MMP3和IL1A,这一趋势伴随着<br>编码衰老标记物p16INK4a的基因在小鼠体内的上调<br>化疗治疗的动物(图5e和扩展数据图6c)。
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药物消除治疗诱导的衰老细胞最大限度地减少化疗的副作用,防止癌症复发动物参考48。然而,PCC1介导的可行性从原发性肿瘤中去除衰老细胞以增强抗癌治疗的效果在很大程度上仍然未知。首先,我们选择通过混合来构建组织重组体PSC27细胞与PC3细胞,这是一种典型的前列腺癌高度恶性的细胞系,以预先优化的比率(1:4)14。这然后将细胞皮下植入后侧面非肥胖糖尿病和严重联合免疫小鼠虚构。动物的肿瘤是在8周周期结束,获取组织进行病理检查cal评估。与包含PC3癌细胞的肿瘤相比和原始PSC27基质细胞,由PC3细胞组成的异种移植物衰老的PSC27细胞显示出显著增加的体积,证实衰老细胞的肿瘤生长促进作用(扩展数据图6a)。为了模拟临床情况,我们实验性地设计了一个包含遗传毒性疗法的临床前方案和/或senolytics(图5a)。皮下植入后两周,当观察到体内肿瘤的稳定摄取时,单剂量米托蒽醌(一种化疗药物)或安慰剂在第3、5和7周的第1天交付给动物直到8周疗程结束(扩展数据图6b)。在…里与安慰剂治疗组相比,麻省理工学院管理评论有效地延缓了肿瘤的生长,验证了麻省理工学院作为一个化疗剂(肿瘤大小减少44.0%)(图5b)。值得注意的是,尽管施用PCC1本身不会引起肿瘤缩小,麻省理工学院治疗,随后PCC1分娩(注射后2周通过腹膜内注射,每公斤20毫克第一次麻省理工学院剂量,然后两周一次)显著增强肿瘤消退(肿瘤大小减少55.2%,相比于仅麻省理工学院;与相比,肿瘤体积减少了74.9%安慰剂治疗)(图5b)。我们接下来测试了细胞衰老是否发生在这些动物的肿瘤病灶。不出所料,麻省理工学院的管理人员诱发了大量衰老细胞的出现肿瘤组织。然而,将PCC1输送到这些化疗中处理过的动物耗尽了大部分衰老细胞(图5c,d)。激光捕获显微切割,随后进行转录分析SASP因子表达显著增加,包括IL6,CXCL8,SPINK1,WNT16B(也称为WNT16),GM-CSF(也称为CSF2)、MMP3和IL1A,这种趋势伴随着中编码衰老标记p16INK4a的基因的上调化疗治疗的动物(图5e和扩展数据图6c)。
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