Gas chromatography-mass spectrometryGC-MS provides robust analyte sepa的简体中文翻译

Gas chromatography-mass spectrometr

Gas chromatography-mass spectrometryGC-MS provides robust analyte separation, reproducible retention times, and peak widths of seconds. GC requires volatile metabolites and gas-phase chemistry; however, most biological metabolites are not volatile by their nature and must be chemically derivatized, which requires dried metabolite extracts, treatment of samples at high temperature and exposure of metabolites to harsh solution conditions. As a result, GC-MS is not the method of choice for chemically-labile, thermally unstable, and easily degradable metabolites (e.g. acyl-carnitines, acyl-CoAs, intact lipid species, phosphorylated intermediates, α-keto-acids). Despite this drawback, GC-MS is used routinely for profiling of organic/amino acids in tissues and bodily fluids32–34 as well as breakdown products of therapeutic and drugs of abuse.35, 36 GC-MS based metabolomics has also been used for non-esterified and esterified fatty acid analyses in plasma samples,37, 38 although GC-MS is not the preferred approach for wide-scale lipidomics.Of GC platforms, the single quadrupole GC-MS is currently the instrument package most often applied to both targeted and nontargeted metabolomics. Nontargeted applications rely on an established in-house retention time/spectral library, since accurate mass determination is not possible.33, 39, 40 For GC-MS with electron impact (EI) ionization, identification of unknown metabolites is aided by a standardized electron energy (i.e. 70eV) for spectral reporting. The standardized electron energy allows easy method transfer between instruments and laboratories, which has resulted in the establishment of large repositories of EI-spectra for unknown metabolite identification, e.g. the NIST database.41Advancements in GC-Q-TOF and GC-Q-Orbitrap technologies have made high-resolution nontargeted metabolomics studies a possibility for GC-MS systems. Coupling the separation capability of GC with accurate mass determination and MS/MS spectral data can enhance discovery-based metabolomics. However, the general pitfalls of GC-MS techniques, including lack of suitability for labile compounds and limited metabolite coverage are still relevant to the more advanced systems.Liquid chromatography-mass spectrometryDue to improvements in high-performance LC (HPLC) and ultra-high performance LC (UHPLC) technology and a variety of column chemistries, LC is now able to separate a wide-range of metabolites, making it very suitable for high-throughput, comprehensive metabolomic analyses of bodily fluids and tissue samples. The commonly used stationary phase chemistries include reverse phase (RP), hydrophilic interaction chromatrography (HILIC), and porous graphitized carbon (PGC). Reverse phase and HILIC are orthogonal chromatographic approaches. Reverse phase chromatography is best applied for nonpolar metabolites analysis, such as glycerolipids, phospholipids, fatty acids, acyl-carnitines and medium/long chain acyl-CoAs. HILIC approaches are more suitable for polar metabolites, including sugar monomers, nucleotides/nucleosides, phosphate compounds, and organic acids. The HILIC technique provides limited separation for very polar molecules, and hence PGC has been applied for separation of such compounds, for example glycans, oligosaccharides and sugar phosphates.42, 43 As the field continues to advance, two-dimensional chromatography approaches may provide a means to interrogate metabolites of wide-ranging polarity in a single method.44, 45 Despite the versatile column chemistries available, an ongoing challenge for LC approaches is their less reproducible chromatography compared to GC methods. Continued improvement of column stationary phases and the flexibility of mobile phase and ion pairing reagent selection will likely narrow this gap in the future.Unlike GC-MS, LC-MS methods do not require volatile analytes and often require very little sample preparation post-extraction. Another benefit of LC-MS techniques is mimimal in-source fragmentation compared to EI-based GC/MS. Thus, the metabolite’s chemical backbone is preserved, which aids in the molecular weight and atomic composition determination of an unknown metabolite. Further fragmentation for MS/MS spectral determination can be performed, if desired. In addition, multiple polarity modes for the LC-MS ion source provides coverage of both positively and negatively charged metabolites.For targeted analyses, LC-MS instruments are typically triple quadrupole due to the high sensitivity and selectivity of monitoring specific ion transitions. For nontargeted and spectral library-assisted applications, TOF and Orbitrap platforms are prevalent due to the instruments’ high-resolution, accurate mass determination and the rich spectral data set that can be collected across a wide m/z range, e.g. the cardiac lipidome.46 Nontargeted TOF and Orbitrap approaches rely on spectral library tools for unknown metabolite identification, but this
0/5000
源语言: -
目标语言: -
结果 (简体中文) 1: [复制]
复制成功!
气相色谱-质谱<br>GC-MS 提供稳定的分析物分离、可重现的保留时间和秒级的峰宽。GC 需要挥发性代谢物和气相化学;然而,大多数生物代谢物本质上不挥发,必须进行化学衍生化,这需要干燥代谢物提取物、高温处理样品以及将代谢物暴露于苛刻的溶液条件下。因此,GC-MS 不是化学不稳定、热不稳定和容易降解的代谢物(例如酰基肉碱、酰基辅酶A、完整的脂质种类、磷酸化中间体、α-酮酸)的首选方法。尽管有这个缺点,GC-MS 仍被常规用于组织和体液中的有机/氨基酸分析 32-34 以及治疗和滥用药物的分解产物 35,<br><br>在 GC 平台中,单四极杆 GC-MS 是目前最常用于靶向和非靶向代谢组学的仪器包。非靶向应用依赖于已建立的内部保留时间/谱库,因为无法进行准确的质量测定。33、39、40 对于具有电子碰撞 (EI) 电离的 GC-MS,未知代谢物的鉴定由标准化电子辅助能量(即 70eV)用于光谱报告。标准化的电子能量允许在仪器和实验室之间轻松进行方法转移,从而建立了用于未知代谢物鉴定的大型 EI 光谱库,例如 NIST 数据库。 41<br><br>GC-Q-TOF 和 GC-Q-Orbitrap 技术的进步使高分辨率非靶向代谢组学研究成为 GC-MS 系统的可能。将 GC 的分离能力与精确质量测定和 MS/MS 光谱数据相结合,可以增强基于发现的代谢组学。然而,GC-MS 技术的一般缺陷,包括缺乏对不稳定化合物的适用性和有限的代谢物覆盖率,仍然与更先进的系统相关。<br><br>液相色谱-质谱<br>由于高效液相色谱 (HPLC) 和超高效液相色谱 (UHPLC) 技术的改进以及各种色谱柱化学成分,LC 现在能够分离多种代谢物,非常适合高通量、体液和组织样本的综合代谢组学分析。常用的固定相化学包括反相 (RP)、亲水相互作用色谱 (HILIC) 和多孔石墨化碳 (PGC)。反相和 HILIC 是正交色谱方法。反相色谱最适用于非极性代谢物分析,例如甘油脂、磷脂、脂肪酸、酰基肉碱和中/长链酰基辅酶A。HILIC 方法更适用于极性代谢物,包括糖单体、核苷酸/核苷、磷酸盐化合物、和有机酸。HILIC 技意味着在单一方法中检测各种极性的代谢物。44, 45 尽管有多种色谱柱可供使用,但与 GC 方法相比,LC 方法的一个持续挑战是它们的色谱重现性较差。色谱柱固定相的持续改进以及流动相和离子对试剂选择的灵活性可能会在未来缩小这一差距。因此,PGC 已被用于分离此类化合物,例如聚糖、寡糖和糖磷酸盐。42, 43 随着该领域的不断发展,二维色谱方法可以提供一种方法,以检测具有广泛极性的代谢物。单一方法。44, 45 尽管可以使用多种色谱柱化学方法,但与 GC 方法相比,LC 方法的一个持续挑战是它们的色谱重现性较差。色谱柱固定相的持续改进以及流动相和离子对试剂选择的灵活性可能会在未来缩小这一差距。因此,PGC 已被用于分离此类化合物,例如聚糖、寡糖和糖磷酸盐。42, 43 随着该领域的不断发展,二维色谱方法可以提供一种方法,以检测具有广泛极性的代谢物。单一方法。44, 45 尽管可以使用多种色谱柱化学方法,但与 GC 方法相比,LC 方法的一个持续挑战是它们的色谱重现性较差。色谱柱固定相的持续改进以及流动相和离子对试剂选择的灵活性可能会在未来缩小这一差距。二维色谱方法可以提供一种在单一方法中检测各种极性的代谢物的方法。44, 45 尽管有多种色谱柱可供使用,但与 GC 方法相比,LC 方法的一个持续挑战是它们的色谱重现性较差。色谱柱固定相的持续改进以及流动相和离子对试剂选择的灵活性可能会在未来缩小这一差距。二维色谱方法可以提供一种在单一方法中检测各种极性的代谢物的方法。44, 45 尽管有多种色谱柱可供使用,但与 GC 方法相比,LC 方法的一个持续挑战是它们的色谱重现性较差。色谱柱固定相的持续改进以及流动相和离子对试剂选择的灵活性可能会在未来缩小这一差距。<br><br>与 GC-MS 不同,LC-MS 方法不需要挥发性分析物,而且萃取后通常需要很少的样品制备。与基于 EI 的 GC/MS 相比,LC-MS 技术的另一个好处是源内碎片最少。因此,保留了代谢物的化学骨架,这有助于确定未知代谢物的分子量和原子组成。如果需要,可以进行进一步的 MS/MS 光谱测定碎裂。此外,LC-MS 离子源的多极性模式可覆盖带正电荷和带负电荷的代谢物。<br><br>对于目标分析,由于监测特定离子跃迁的高灵敏度和选择性,LC-MS 仪器通常是三重四极杆。对于非靶向和光谱库辅助应用,TOF 和 Orbitrap 平台由于仪器的高分辨率、准确的质量测定和可在宽 m/z 范围内收集的丰富光谱数据集(例如心脏脂质组)而流行。 46 非靶向 TOF 和 Orbitrap 方法依赖于光谱库工具来鉴定未知代谢物,但是这
正在翻译中..
结果 (简体中文) 2:[复制]
复制成功!
气相色谱-质谱法<br>GC-MS提供了可靠的分析物分离、可重复的保留时间和秒的峰宽。GC需要挥发性代谢物和气相化学;然而,大多数生物代谢物本质上不易挥发,必须进行化学衍生,这需要干燥代谢物提取物、在高温下处理样品以及将代谢物暴露在苛刻的溶液条件下。因此,GC-MS不是化学不稳定、热不稳定和易于降解的代谢物(例如酰基肉碱、酰基辅酶a、完整脂质、磷酸化中间体、α-酮酸)的首选方法。尽管存在这一缺点,GC-MS通常用于分析组织和体液中的有机/氨基酸32–34以及治疗药物和滥用药物的分解产物。35,36基于GC-MS的代谢组学也用于血浆样品中的非酯化和酯化脂肪酸分析,37,38尽管GC-MS不是大规模脂质组学的首选方法。<br>在GC平台中,单四极GC-MS是目前最常用于靶向和非靶向代谢组学的仪器包。非目标应用依赖于已建立的内部保留时间/光谱库,因为不可能精确测定质量。33,39,40对于带有电子碰撞(EI)电离的GC-MS,未知代谢物的鉴定借助于光谱报告的标准化电子能量(即70eV)。标准化的电子能使仪器和实验室之间的方法转换变得容易,从而建立了用于未知代谢物鉴定的大型EI光谱库,如NIST数据库。41<br>GC-Q-TOF和GC-Q-Orbitrap技术的进步使高分辨率非靶向代谢组学研究成为GC-MS系统的可能。将GC的分离能力与准确的质量测定和MS/MS光谱数据相结合,可以增强基于发现的代谢组学。然而,GC-MS技术的一般缺陷,包括对不稳定化合物缺乏适用性和代谢物覆盖范围有限,仍然与更先进的系统有关。<br>液相色谱-质谱法<br>由于高性能液相色谱(HPLC)和超高性能液相色谱(UHPLC)技术的改进以及各种色谱柱化学,液相色谱现在能够分离多种代谢物,非常适合于体液和组织样品的高通量、综合代谢组学分析。常用的固定相化学包括反相(RP)、亲水作用色谱(HILIC)和多孔石墨化碳(PGC)。反相和HILIC是正交色谱法。反相色谱法最适用于非极性代谢物分析,如甘油脂、磷脂、脂肪酸、酰基肉碱和中/长链酰基辅酶A。HILIC方法更适用于极性代谢物,包括糖单体、核苷酸/核苷、磷酸盐化合物和有机酸。HILIC技术为极性分子提供了有限的分离,因此PGC已应用于分离此类化合物,例如聚糖、低聚糖和糖磷酸盐。42、43随着该领域的不断发展,二维色谱法可以提供一种方法,用一种方法来检测极性范围广泛的代谢物。44,45尽管可用的色谱柱化学方法多种多样,但LC方法的一个持续挑战是其色谱法的重现性比GC方法差。柱固定相的持续改进以及流动相和离子配对试剂选择的灵活性将可能在未来缩小这一差距。<br>与GC-MS不同,LC-MS方法不需要挥发性分析物,萃取后通常只需很少的样品制备。与基于EI的GC/MS相比,LC-MS技术的另一个优点是源片段化程度最低。因此,代谢物的化学主链得以保留,这有助于未知代谢物的分子量和原子组成测定。如果需要,可以执行用于MS/MS光谱测定的进一步分段。此外,LC-MS离子源的多极性模式可覆盖带正电和带负电的代谢物。<br>对于目标分析,LC-MS仪器通常为三重四极,这是由于监测特定离子跃迁的高灵敏度和选择性。对于非目标和光谱库辅助应用,TOF和Orbitrap平台因其高分辨率、准确的质量测定和可在宽m/z范围内收集的丰富光谱数据集而流行,例如心脏脂质体。46非目标TOF和Orbitrap方法依赖光谱库工具进行未知代谢物鉴定,但
正在翻译中..
结果 (简体中文) 3:[复制]
复制成功!
气相色谱-质谱分析法气相色谱-质谱提供了稳定的分析物分离、可重现的保留时间和秒的峰宽。气相色谱需要挥发性代谢物和气相化学;然而,大多数生物代谢物本质上是不挥发的,必须进行化学衍生,这需要干燥的代谢物提取物、高温处理样品以及将代谢物暴露于苛刻的溶液条件下。因此,气相色谱-质谱不是化学不稳定、热不稳定和易降解代谢物(如酰基肉碱、酰基辅酶a、完整脂质类、磷酸化中间体、α-酮酸)的首选方法。尽管有这个缺点,气相色谱-质谱通常用于组织和体液中的有机/氨基酸分析32–34以及治疗和滥用药物的分解产物。35,36基于气相色谱-质谱的代谢组学也用于血浆样品中的非酯化和酯化脂肪酸分析,37,38尽管气相色谱-质谱不是大规模脂质组学的首选方法。在气相色谱平台中,单四极杆气相色谱-质谱是目前最常用于靶向和非靶向代谢组学的仪器包。非靶向应用依赖于已建立的内部保留时间/光谱库,因为精确的质量测定是不可能的。33、39、40对于具有电子碰撞(EI)电离的气相色谱-质谱,未知代谢物的鉴定由用于光谱报告的标准化电子能量(即70eV)辅助。标准化的电子能量使得仪器和实验室之间的方法转移变得容易,这导致建立了用于未知代谢物鉴定的大的电子能谱储存库,例如NIST数据库气相色谱-质谱联用技术和气相色谱-质谱联用技术的发展使得高分辨率非靶向代谢组学研究成为可能。将气相色谱的分离能力与准确的质量测定和质谱数据相结合,可以增强基于发现的代谢组学。然而,气相色谱-质谱技术的普遍缺陷,包括缺乏对不稳定化合物的适应性和有限的代谢物覆盖,仍然与更先进的系统相关。液相色谱-质谱由于高效液相色谱(HPLC)和超高效液相色谱(UHPLC)技术以及各种色谱柱化学的改进,液相色谱现在能够分离多种代谢物,非常适合体液和组织样本的高通量、全面的代谢组学分析。常用的固定相化学包括反相、亲水相互作用色谱和多孔石墨化碳(PGC)。反相和HILIC是正交色谱方法。反相色谱最适用于非极性代谢物分析,如甘油三酯、磷脂、脂肪酸、酰基肉碱和中/长链酰基辅酶a。HILIC方法更适合极性代谢物,包括糖单体、核苷酸/核苷、磷酸盐化合物和有机酸。HILIC技术为极性很强的分子提供了有限的分离,因此PGC已被用于分离此类化合物,例如聚糖、寡糖和磷酸糖。42、43随着该领域的不断发展,二维色谱方法可能提供了一种在单一方法中查询大范围极性代谢物的方法。44、45尽管有多种可用的柱化学,但与气相色谱方法相比,液相色谱方法的一个持续挑战是它们的重现性较差。色谱柱固定相的不断改进以及流动相和离子对试剂选择的灵活性将有可能在未来缩小这一差距。与气相色谱-质谱不同,液相色谱-质谱方法不需要挥发性分析物,通常在提取后只需要很少的样品制备。液相色谱-质谱技术的另一个好处是,与基于离子交换色谱/质谱的技术相比,它可以在来源内进行最小化。因此,代谢物的化学骨架得以保留,这有助于未知代谢物的分子量和原子组成的测定。如果需要,可以对质谱进行进一步的碎片化。此外,液相色谱-质谱离子源的多种极性模式覆盖了带正电荷和负电荷的代谢物。对于目标分析,由于监测特定离子跃迁的高灵敏度和选择性,液相色谱-质谱仪器通常为三重四极杆。对于非靶向和光谱库辅助的应用,TOF和Orbitrap平台非常普遍,因为仪器具有高分辨率、精确的质量测定和丰富的光谱数据集,可以在很宽的m/z范围内收集,例如心脏脂质图。46非靶向TOF和Orbitrap方法依赖光谱库工具来识别未知代谢物,但这
正在翻译中..
 
其它语言
本翻译工具支持: 世界语, 丹麦语, 乌克兰语, 乌兹别克语, 乌尔都语, 亚美尼亚语, 伊博语, 俄语, 保加利亚语, 信德语, 修纳语, 僧伽罗语, 克林贡语, 克罗地亚语, 冰岛语, 加利西亚语, 加泰罗尼亚语, 匈牙利语, 南非祖鲁语, 南非科萨语, 卡纳达语, 卢旺达语, 卢森堡语, 印地语, 印尼巽他语, 印尼爪哇语, 印尼语, 古吉拉特语, 吉尔吉斯语, 哈萨克语, 土库曼语, 土耳其语, 塔吉克语, 塞尔维亚语, 塞索托语, 夏威夷语, 奥利亚语, 威尔士语, 孟加拉语, 宿务语, 尼泊尔语, 巴斯克语, 布尔语(南非荷兰语), 希伯来语, 希腊语, 库尔德语, 弗里西语, 德语, 意大利语, 意第绪语, 拉丁语, 拉脱维亚语, 挪威语, 捷克语, 斯洛伐克语, 斯洛文尼亚语, 斯瓦希里语, 旁遮普语, 日语, 普什图语, 格鲁吉亚语, 毛利语, 法语, 波兰语, 波斯尼亚语, 波斯语, 泰卢固语, 泰米尔语, 泰语, 海地克里奥尔语, 爱尔兰语, 爱沙尼亚语, 瑞典语, 白俄罗斯语, 科西嘉语, 立陶宛语, 简体中文, 索马里语, 繁体中文, 约鲁巴语, 维吾尔语, 缅甸语, 罗马尼亚语, 老挝语, 自动识别, 芬兰语, 苏格兰盖尔语, 苗语, 英语, 荷兰语, 菲律宾语, 萨摩亚语, 葡萄牙语, 蒙古语, 西班牙语, 豪萨语, 越南语, 阿塞拜疆语, 阿姆哈拉语, 阿尔巴尼亚语, 阿拉伯语, 鞑靼语, 韩语, 马其顿语, 马尔加什语, 马拉地语, 马拉雅拉姆语, 马来语, 马耳他语, 高棉语, 齐切瓦语, 等语言的翻译.

Copyright ©2024 I Love Translation. All reserved.

E-mail: