Under homeostatic conditions (mora et al., 201), administration of a m的简体中文翻译

Under homeostatic conditions (mora

Under homeostatic conditions (mora et al., 201), administration of a multi-strain probiotic preparation was associated with limited colonization in mice and with person-specific gut mucosal colonization resistance in humans. To study the post-antibiotic mucosal colonization capacity of probiotics and their impact on the indigenous mucosal microbiome as compared to aFMT or watchful waiting, we performed the MUcosal Search for Probiotic Impact and Colonization 3 (MUSPIC3) study in mice and in humans. In mice, we supplemented the drinking water of adult male wild-type (WT) C57BL/6 mice with a broad-spectrum antibiotic regimen of ciprofloxacin and metronidazole for 2 weeks. The immediate impact of antibiotic treatment on gut mucosal microbiome configuration was assessed in one group of mice sacrificed after the 2-week antibiotic exposure (Figure 1A, “Antibiotics”). The remaining animals (n = 30) were divided into three post-antibiotic intervention groups. In the first group (“Probiotics”), antibiotic treatment was followed by 4 weeks of daily administration by oral gavage of a commercially prescribed probiotics product involving 11 strains that was validated for composition and viability by multiple methods (mora et al., 201): Lactobacillus acidophilus (LAC), L. casei (LCA), L. casei sbsp. paracasei (LPA), L. plantarum (LPL), L. rhamnosus (LRH), Bifidobacterium longum (BLO), B. bifidum (BBI), B. breve (BBR), B. longum sbsp. infantis (BIN), Lactococcus lactis (LLA), and Streptococcus thermophilus (STH). Each mouse of the second group (“aFMT”) received, on the day following cessation of antibiotics, an oral gavage of its own pre-antibiotics stool microbiome. A third group (“Spontaneous”) remained untreated following antibiotic therapy to assess the spontaneous recovery of the indigenous gut microbiome in this setting. An additional group of mice (“Control”) did not receive antibiotics or any other treatment and was followed throughout the study’s duration.
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下稳态条件(猜拳等人,201),多菌种的益生菌制剂的施用与有限定植在小鼠和与人类个体特异性的肠粘膜建群抗性相关。为了研究益生菌的抗生素后粘膜定植能力和他们相比,AFMT或观察等待对土著微生物粘膜的影响,我们进行了粘膜搜索益生菌影响和定植3(MUSPIC3)在小鼠和人类的研究。在小鼠中,我们补充成年雄性野生型(WT)C57BL / 6小鼠的饮用水与环丙沙星和甲硝唑的2周广谱抗生素治疗方案。上肠粘膜微生物配置抗生素治疗的直接影响在一组小鼠中评估处死2周抗生素曝光后(图1A,“抗生素”)。剩余的动物(n = 30)随机分为后抗生素干预组。在第一组(“益生菌”),抗生素治疗之后4周每日给药通过涉及11株市售规定益生菌产品的经口管饲这是验证通过多种方法的组合物和活力(猜拳等人,201) :嗜酸乳杆菌(LAC),干酪乳杆菌(LCA),干酪乳杆菌SBSP。副干酪(LPA),植物乳杆菌(LPL),鼠李糖乳杆菌(LRH),长双歧杆菌(BLO),两歧双歧杆菌(BBI),短双歧杆菌(BBR),长双歧杆菌SBSP。婴儿(BIN),乳酸乳球菌(LLA),和嗜热链球菌(STH)。第二组(“AFMT”)的每只小鼠接受,在天以下抗生素停止,其自己的预抗生素粪便微生物的口服管饲法。第三组(“自发”)以下的抗生素治疗,以评估在此设置土著肠道微生物的自发恢复保持未处理。小鼠的其他组(“控制”)没有接受抗生素或其他治疗,随后在整个研究的持续时间。
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在静息条件下(mora等人,201),多毒菌原制剂的配管与小鼠的有限殖民化以及人类特有的肠道粘膜殖民化抵抗有关。为了研究益生菌的后抗生素粘膜殖民化能力及其对本地粘膜微生物群的影响,与FMT或警惕等待相比,我们在小鼠身上进行了益生菌冲击和殖民化的MUcosal搜索3(MUSPIC3)研究和人类一样在小鼠中,我们用西普洛沙星和甲苯甲酸的广谱抗生素方案补充成年雄性野生型(WT)C57BL/6小鼠的饮用水,为期2周。抗生素治疗对肠道粘膜微生物群配置的直接影响在一组小鼠中进行了评估,这些小鼠在2周抗生素接触后牺牲(图1A,"抗生素")。其余动物(n = 30)被分成三个抗生素后干预组。在第一组("益生菌"),抗生素治疗之后每天给药4周,口服一种商业处方的益生菌产品,涉及11个菌株,通过多种方法验证其成分和生存能力(Mora等人,201):嗜酸乳杆菌(LAC),L. casei(LCA),L. casei sbsp。紫杉醇(LPA),L. 植物(LPL),L. rhamnosus (LRH), 长球杆菌 (BLO), B. 双歧杆菌 (BBI), B. 布雷夫 (BBR), B. 长鼻管。婴儿(BIN)、乳酸乳酸乳酸杆菌(LLA)和嗜热杆菌链球菌(STH)。第二组("aFMT")的每只小鼠在抗生素停止后的第二天收到其自身抗生素前粪便微生物群的口服量。第三组("自发")在抗生素治疗后仍未得到治疗,以评估这种环境中土著肠道微生物群的自发恢复。另外一组小鼠("对照")没有接受抗生素或任何其他治疗,在整个研究期间都遵循了这种治疗。
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在稳态条件下(Mora等人,201),给药多菌株益生菌制剂与小鼠的有限定殖和人的特定肠道粘膜定殖抵抗有关。为了研究与afmt或watchful waiting相比,益生菌的抗生素后粘膜定植能力及其对本地粘膜微生物的影响,我们在小鼠和人类中进行了粘膜益生菌影响和定植3(muspic3)研究。在小鼠中,我们用环丙沙星和甲硝唑的广谱抗生素方案补充成年雄性野生型c57bl/6小鼠的饮用水2周。抗生素治疗对2周抗生素暴露后处死的一组小鼠肠道粘膜微生物组构的直接影响进行了评估(图1a,“抗生素”)。其余动物(n=30)分为3个抗生素后干预组。在第一组(“益生菌”)中,抗生素治疗后,每天通过口灌胃给药4周,商业处方益生菌产品涉及11个菌株,通过多种方法验证其组成和活性(Mora等人,201):嗜酸乳杆菌(Lac)、干酪乳杆菌(LCA)、干酪乳杆菌SBSP。副干酪(lpa)、植物乳杆菌(lpl)、鼠李糖乳杆菌(lrh)、长双歧杆菌(blo)、双歧杆菌(bbi)、短双歧杆菌(bbr)、长双歧杆菌sbsp。婴儿(BIN)、乳酸乳球菌(LLA)和嗜热链球菌(STH)。第二组(afmt)的每只小鼠在停止使用抗生素后的第二天,口服其自身的抗生素前粪便微生物群。第三组(“自发的”)在抗生素治疗后仍然没有接受治疗,以评估在这种情况下本地肠道微生物群的自发恢复。另外一组小鼠(“对照组”)没有接受抗生素或任何其他治疗,并在整个研究期间进行随访。<br>
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