Firstly, the biofilm formation of AbIC IΔblp1 and AbIC IIΔblp1 mutants的繁体中文翻译

Firstly, the biofilm formation of A

Firstly, the biofilm formation of AbIC IΔblp1 and AbIC IIΔblp1 mutants and their blp1-complemented strains was assessed. Bacteria were grown on the plastic surface and the formed structures were analyzed by confocal laser scanning microscopy (CLSM) using SYTO9 and propidium iodide (PI) staining as described in Materials and Methods. Interestingly, 2 h post-seeding, the initial attachment of bacteria to the plastic surface, based on the increase of PI-stained (red stain) versus total amount of bacteria (green stain) was affected in AbIC IΔblp1 mutant, demonstrating up to 55% increase in PI-stained bacteria compared with the parental strain (Fig. 2a, upper panels). Contrary to the AbIC IΔblp1 mutant, the AbIC IIΔblp1 strain showed no alterations in the initial attachment compared to the parent, evident through the lack of PI-stained bacteria and through the formation of more uniform biofilm structure similar to parental strain (Fig. 2a, lower panels). To verify that the observed phenotype of AbIC IΔblp1 was indeed blp1-dependent, we introduced plasmids pblp1IC I and pblp1IC II carrying respective blp1 alleles into AbIC IΔblp1 bacteria and assessed their attachment to the plastic surface. Notably,both blp1 alleles efficiently restored the phenotype of AbIC IΔblp1 mutant manifested by the reduction in PIstained cells compared to the AbIC IΔblp1 mutant carrying control plasmid (Fig. 2b and Additional file 3: Figure S2).
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首先,評估了AbICIΔblp1和AbICIIΔblp1突變體及其blp1互補菌株的生物膜形成。細菌生長在塑料表面上,並如材料和方法中所述,使用SYTO9和碘化丙啶(PI)染色,通過共聚焦激光掃描顯微鏡(CLSM)分析形成的結構。有趣的是,播種後2小時,AbICIΔblp1突變體影響了基於PI染色(紅色污漬)相對於細菌總數(綠色污漬)增加的細菌到塑料表面的初始附著,結果表明多達55個與親本菌株相比,PI染色細菌的百分數增加(圖2a,上圖)。與AbICIΔblp1突變體相反,AbICIIΔblp1菌株與親本相比,初始附著沒有變化,通過缺乏PI染色細菌和形成類似於親本菌株的更均勻的生物膜結構(圖2a,下圖)可以明顯看出這一點。為了驗證觀察到的AbICIΔblp1表型確實是blp1依賴性的,我們將攜帶各自blp1等位基因的質粒pblp1IC I和pblp1IC II引入了AbICIΔblp1細菌中,並評估了它們與塑料表面的附著。值得注意的是<br>與攜帶對照質粒的AbICIΔblp1突變體相比,兩個blp1等位基因均有效地恢復了PIstained細胞減少所表現出的AbICIΔblp1突變體的表型(圖2b和附加文件3:圖S2)。
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首先,對AbIC I μblp1和AbIC II+blp1突變體及其blp1互補菌株的生物膜形成進行了評估。細菌生長在塑膠表面,使用SYTO9和碘化(PI)染色(材料和方法)所述,通過共生鐳射掃描顯微鏡(CLSM)對形成結構進行分析。有趣的是,在AbIC I+bblp1突變體中,根據PI染色(紅色污漬)與細菌總量(綠色污漬)的增加,在播種后2小時,細菌最初附著在塑膠表面,與親親菌株相比,PI染色細菌增加了55%(圖2a,上面板)。與AbIC I+bblp1突變體相反,AbIC II+blp1菌株在初始附著方面與父系相比沒有任何變化,明顯是缺乏PI染色細菌,以及形成與父系菌株相似的更均勻的生物膜結構(圖2a,下面板)。為了驗證AbIC I+bp1的觀測表型確實與blp1相關,我們引入了質粒pblp1IC I和pblp1IC II,將各自的blp1等位基因攜帶到AbIC I+blp1細菌中,並評估其附著在塑膠表面。特別是。<br>兩個blp1等位基因有效地恢復了AbIC I+bblp1突變體表型,表現為與AbIC I+bp1突變體攜帶控制質粒相比,皮塔辛細胞的減少所表現的表型(圖2b和附加檔3:圖S2)。
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首先,對AbICⅠΔblp1和AbICⅡΔblp1突變體及其blp1補充菌株的生物膜形成進行了研究。用SYTO9和碘化丙啶(PI)染色法,用共焦雷射掃描顯微鏡(CLSM)對塑膠表面生長的細菌進行分析。有趣的是,播種後2小時,AbIC IΔblp1突變株中,基於PI染色(紅色染色)與細菌總數(綠色斑點)的新增,細菌在塑膠表面的初始附著受到影響,表明與親本菌株相比,PI染色細菌新增了55%(圖2a,上部面板)。與AbIC IΔblp1突變株相反,與親本相比,AbIC IIΔblp1菌株在最初的附著上沒有表現出任何變化,這一點通過缺乏PI染色的細菌和形成與親本菌株相似的更均勻的生物膜結構而明顯(圖2a,下錶)。為了驗證所觀察到的AbIC IΔblp1錶型確實依賴於blp1,我們將攜帶blp1等位基因的質粒pblp1IC I和pblp1IC II導入AbIC IΔblp1細菌中,並評估它們在塑膠表面的附著情况。尤其是,<br>與攜帶對照質粒的AbIC IΔblp1突變體相比,這兩個blp1等位基因有效地恢復了AbIC IΔblp1突變體的錶型,表現為被捕獲細胞的减少(圖2b和附加檔3:圖S2)。<br>
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