Mechanical stress stimulates RhoA activation and F‐actin filaments ass的简体中文翻译

Mechanical stress stimulates RhoA a

Mechanical stress stimulates RhoA activation and F‐actin filaments assembly in CTCsWe noticed that when the CTCs entering the host capillaries, they were greatly elongated (Fig. 2a and Supporting Information Fig. S4). Such slenderized cells were suffering from extremely high mechanical stress from vascular luminal walls when passaging through these narrow straits. In fact, many researchers have reasoned that mechanical stress was an important parameter controlling the cell function and behaviors, which include but not limited to cell shape, cell invasion ability, differentiation and even immunogenicity.22, 23 To test whether the mechanical stress from the capillaries was associating with F‐actin assembly in CTCs, we designed a blood capillary‐like micropore arrays (200 × 200 pores, pore diameter = 8 μm, thickness = 100 μm), which was printed using a DLP‐based bioprinter–DOPsL with photopolymerizable poly(ethylene glycol) diacrylate (PEGDA).24 B16 tumor cells were then pushed passing through the 3D printed strains at the same rate as they entered the zebrafish trunk capillaries (∼10 μm/min in our setting) (Figs. 4a and 4b). The squeezed tumor cells were floating cultured in ultra‐low attachment culture dish for 4 hr with or without the treatment of Rho kinase inhibitor (Y‐27632, 2 μM). Then the floating cells were spun down using cytospinTM on microscope slides and stained using Rhodamine‐phalloidin. To avoid the potential effect of cytospinning on the rounding of cells, cells were fixed immediately (
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机械应力刺激RhoA活化和装配F-肌动蛋白长丝的CTC<br>我们注意到,当进入的CTC主机毛细血管,他们被大大拉长(图2a和支持信息图S4)。这种拉伸细化细胞从非常高的机械应力从血管腔壁通过这些狭窄的海峡传代时的痛苦。事实上,许多研究人员推测,机械应力是控制细胞的功能和行为,包括但不限于细胞形状,侵袭能力,分化甚至immunogenicity.22,23测试是否从机械应力的一个重要参数毛细管用F-肌动蛋白组装的CTC中相关联,我们设计了一个血液毛细管样微孔阵列(200×200孔,孔直径= 8微米,厚度=100μm)的,其使用基于DLP的生物打印机-DOPsL与可光聚合的聚(乙二醇)二丙烯酸酯的印刷(PEGDA)0.24 B16肿瘤细胞然后被推透过3D印刷菌株以相同的速率,因为它们进入了斑马鱼躯干毛细管(〜10在我们的设置微米/分钟)(图4a和4b)。受挤压的肿瘤细胞在超低附着培养皿浮培养4小时有或无的Rho治疗激酶抑制剂(Y-27632,2μM)。然后浮动离心细胞在显微镜玻片上使用cytospinTM和使用罗丹明鬼笔环肽染色。为了避免cytospinning细胞上的倒圆的潜在影响,将细胞立即固定(然后在24个B16肿瘤细胞被推透过3D印刷菌株以相同的速率,因为它们进入了斑马鱼躯干毛细管(在我们的设置〜10微米/分钟)(图4a和4b)。受挤压的肿瘤细胞在超低附着培养皿浮培养4小时有或无的Rho治疗激酶抑制剂(Y-27632,2μM)。然后浮动离心细胞在显微镜玻片上使用cytospinTM和使用罗丹明鬼笔环肽染色。为了避免cytospinning细胞上的倒圆的潜在影响,将细胞立即固定(然后在24个B16肿瘤细胞被推透过3D印刷菌株以相同的速率,因为它们进入了斑马鱼躯干毛细管(在我们的设置〜10微米/分钟)(图4a和4b)。受挤压的肿瘤细胞在超低附着培养皿浮培养4小时有或无的Rho治疗激酶抑制剂(Y-27632,2μM)。然后浮动离心细胞在显微镜玻片上使用cytospinTM和使用罗丹明鬼笔环肽染色。为了避免cytospinning细胞上的倒圆的潜在影响,将细胞立即固定(然后浮动离心细胞在显微镜玻片上使用cytospinTM和使用罗丹明鬼笔环肽染色。为了避免cytospinning细胞上的倒圆的潜在影响,将细胞立即固定(然后浮动离心细胞在显微镜玻片上使用cytospinTM和使用罗丹明鬼笔环肽染色。为了避免cytospinning细胞上的倒圆的潜在影响,将细胞立即固定(
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机械应力刺激 RDC 中的 RhoA 活化和 F_actin 灯丝组装<br>我们注意到,当CTC进入主机毛细血管时,它们被大大拉长(图2a和支持信息图)。S4)。这些纤细的细胞在穿过这些狭窄的海峡时,承受着血管发光壁的极高机械应力。事实上,许多研究人员已经推断机械应力是控制细胞功能和行为的重要参数, 包括但不限于细胞形状、细胞入侵能力、分化甚至免疫原性。 22、23 为了测试毛细血管的机械应力是否与 CTC 中的 F_actin 组装相关,我们设计了一个血毛细管,如微孔阵列(200 × 200 孔,孔径 = 8 μm,厚度 = 100 μm),该血毛细管使用基于 DLP 的生物打印机打印光聚合聚(乙二醇)二甲丙烯酸酯(PEGDA)24 B16肿瘤细胞然后被推过3D打印菌株,以相同的速率进入斑马鱼躯干毛细血管(在我们的设置中为±10μm/min)(图4a和4b)。挤压的肿瘤细胞在超低附着培养皿中浮动培养4小时,无论是否治疗Rho激酶抑制剂(Y_27632,2 μM)。然后,在显微镜幻灯片上使用细胞平TM将浮动细胞旋转下来,并使用罗达明-phalloidin染色。为了避免细胞旋转对细胞舍入的潜在影响,立即修复了细胞(
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机械应力刺激CTCs中RhoA活化和F-肌动蛋白丝组装<br>我们注意到,当ctc进入宿主毛细血管时,它们被大大拉长(图2a和支持信息图S4)。当这些细长的细胞通过这些狭窄的海峡时,血管腔壁承受着极高的机械应力。事实上,许多研究者认为机械应力是控制细胞功能和行为的一个重要参数,包括但不限于细胞形态、细胞侵袭能力、分化甚至免疫原性。22、23测试来自毛细血管的机械应力是否与F-肌动蛋白组装有关在CTCs中,我们设计了一个毛细血管样微孔阵列(200×200孔,孔径 = 8μm,厚度 = 100μm),使用基于DLP的生物打印机DOPsL和光聚合聚乙二醇二丙烯酸酯(PEGDA)打印。24个B16肿瘤细胞以相同的速率通过3D打印菌株当它们进入斑马鱼躯干的毛细血管时(在我们的环境中为10μm/m in)(图。4a和4b)。挤压后的肿瘤细胞在超低贴壁培养皿中漂浮培养4小时,加用或不加Rho激酶抑制剂(Y-27632,2μM)。然后用显微镜载玻片上的cytospinTM将漂浮细胞纺下来,并用罗丹明-法洛肽染色。为了避免细胞旋转对细胞圆整的潜在影响,细胞被立即固定(
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