Gene Set Enrichment Analysis.To identify the functional differences th的简体中文翻译

Gene Set Enrichment Analysis.To ide

Gene Set Enrichment Analysis.To identify the functional differences that reflect the transcriptional differences between EVT and VT, a Gene Set Enrichment Analysis (GSEA) was performed. GSEA is a computational method that uses an a priori-defined set of genes and determines which “functional” sets of genes are up-regulated. GSEA software was used to generate a list of functional gene sets that are specifically overrepresented in VT or EVT. Interestingly, in EVT, 14 functional gene sets of the 20 most significantly enriched gene sets were associated with direct immune and lymphocyte activation (SI Appendix, Table S2). The core genes of these immune-activation–related pathways are cytokines such as Epstein–Barr virus-induced gene-3 (EBI3), tumor growth factor beta-1 (TGF-β1), TGF-β2, IL-8, and the cell-surface molecule CD276 (B7-H3) and cytotoxic and regulatory T-cell molecule (CRTAM), which can all directly influence lymphocyte binding and are potent inhibitors of lymphocyte activation (SI Appendix, Fig. S7). EBI3 is known to dimerize with two α-chains, IL-12(p28) and IL-12(p35), to form the immune-suppressive cytokines IL-27 and IL-35 (30). However, neither of these IL-12 α-chains are expressed by EVT. How EIB3 functions in EVT and whether EBI3 can form homo-dimers or pairs with an unknown α-chain remain to be determined. The functional gene sets enriched in VT were less significant (increased false discovery rate) and more diverse in function (SI Appendix, Table S3).Coculture of EVT with Sample Matched Maternal Leukocytes.To evaluate the implications of the striking immune-activating and -regulating potential of EVT demonstrated in the GSEA, VT- and EVT-enriched cocultures with all major maternal leukocyte subsets (dNK, dMɸ, CD4+, and CD8+ dT cells) were established. For this sample, matched trophoblast and decidual leukocytes or trophoblasts and peripheral blood leukocytes from unrelated nonpregnant donors were used. The FACS sorting strategy for all cell types can be found in SI Appendix, Fig. S8. Microscopy images revealed that EVT adhere to fibronectin with a distinct, large, spread-out morphology and interact with multiple other EVT. Furthermore, HLA-G+ EVT with various sizes and morphology are found in the cell cultures whereas VT are homogenous, small, rounded cells that do not adhere to fibronectin (SI Appendix, Fig. S9A). Light microscopy also revealed clustering of NK, CD4+, and CD8+ T cells around the large EVT. Multiple NK or T cells can interact with one EVT, either at the cell body or at filopodia-like structures that spread out from the EVT cell body (SI Appendix, Fig. S9B). No signs of cytolysis of EVT were observed in any of the trophoblast–leukocyte cocultures.
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基因集富集分析。<br>要确定反映EVT和VT之间的差异转录功能差异,基因组富集分析(GSEA)进行。GSEA是使用一个先验定义的一组基因,并确定哪个“功能性”的基因集合的是的计算方法上调。GSEA软件被用来产生,其将在VT或EVT特异性过表达功能基因集列表。有趣的是,在EVT,20个最显著富集基因组的14个功能性基因组用直接免疫和淋巴细胞活化(SI附录,表S2)相关联。这些免疫激活相关的途径的核心基因是细胞因子,如Epstein-Barr病毒诱导的基因3(EBI3),肿瘤生长因子β-1(TGF-β1),TGF-β2,IL-8,与细胞表面分子CD276(B7-H3)和细胞毒性和调节性T细胞分子(CRTAM),其都可以直接影响淋巴细胞结合和是淋巴细胞活化的有效抑制剂(SI附录,图S7)。EBI3已知具有两个α链,IL-12(P28)和IL-12(P35)二聚化,以形成免疫抑制性细胞因子IL-27和IL-35(30)。然而,无论这些IL-12α-链通过EVT表示。如何仍有待确定在EVT和是否EBI3可以形成同型二聚体或对与未知α链EIB3功能。在VT富集的功能性基因组不太显著(增加的错误发现率),并在功能(SI附录,表S3)更加多样化。EBI3已知具有两个α链,IL-12(P28)和IL-12(P35)二聚化,以形成免疫抑制性细胞因子IL-27和IL-35(30)。然而,无论这些IL-12α-链通过EVT表示。如何仍有待确定在EVT和是否EBI3可以形成同型二聚体或对与未知α链EIB3功能。在VT富集的功能性基因组不太显著(增加的错误发现率),并在功能(SI附录,表S3)更加多样化。EBI3已知具有两个α链,IL-12(P28)和IL-12(P35)二聚化,以形成免疫抑制性细胞因子IL-27和IL-35(30)。然而,无论这些IL-12α-链通过EVT表示。如何仍有待确定在EVT和是否EBI3可以形成同型二聚体或对与未知α链EIB3功能。在VT富集的功能性基因组不太显著(增加的错误发现率),并在功能(SI附录,表S3)更加多样化。<br><br>与样品EVT共培养匹配的产妇白细胞。<br>为了评估的影响引人注目的免疫激活和-regulating EVT在GSEA,VT-示范和EVT富集共同培养的潜力与所有主要的孕产妇白细胞亚群(DNK,dMɸ,CD4 +,和CD8 +细胞的dT)建立。对于此示例,匹配滋养层和蜕膜白细胞或绒毛和从非妊娠无关供体的外周血白细胞中。分拣所有细胞类型的策略FACS可以在SI附录,图S8被发现。显微镜图像显示,EVT坚持纤连蛋白具有鲜明的,大的,展开的形态和交互与多个其他EVT。此外,HLA-G + EVT具有各种尺寸和形态的细胞培养物而VT被发现是均匀的,小的,圆形细胞不粘附到纤连蛋白(SI附录,图S9A)。光学显微镜还透露NK,CD4 +和CD8 + T细胞周围的大EVT集群。多个NK细胞或T细胞可以在细胞体或在与一个EVT相互作用,丝状伪足状结构从EVT细胞体(SI附录,图S9B)传播出来。在任何滋养细胞 - 白细胞共培养中观察到EVT的细胞溶解的迹象。
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基因集浓缩分析。<br>为了识别反映EVT和VT之间的转录差异的功能差异,进行了基因集扩集分析(GSEA)。GSEA 是一种计算方法,它使用一组先验定义的基因,并确定哪些"功能"基因集是向上调控的。GSEA 软件用于生成在 VT 或 EVT 中特别多占比例的功能基因集列表。有趣的是,在EVT中,20个最富足的基因组中有14个功能基因组与直接免疫和淋巴细胞激活有关(SI附录,表S2)。这些免疫活化相关通路的核心基因是细胞因子,如爱泼斯坦-巴尔病毒诱导基因-3(EBI3)、肿瘤生长因子β-1(TGF-+1)、TGF-2、IL-8和细胞表面分子CD276(B7-H3)和细胞毒性和调节性T细胞分子(CRTAM),所有可以直接影响淋巴细胞结合,是淋巴细胞活化的有力抑制剂(SI附录,图。S7)。EBI3已知用两个β链,IL-12(p28)和IL-12(p35)进行分光,形成免疫抑制细胞因子IL-27和IL-35(30)。然而,这些IL-12+链都没有由EVT表示。EIB3在EVT中如何发挥作用,EBI3能否形成同质体或与未知β链的对,仍有待确定。VT中富集的功能基因组不太显著(错误发现率增加),功能更多样化(SI附录,表S3)。<br><br>EVT与样本匹配的母性白细胞的共培养。<br>为了评估在GSEA中展示的EVT惊人的免疫激活和调节潜力的影响,建立了VT-和EVT富集的共培养与所有主要的母性白细胞子集(dNK、dM+、CD4+和CD8+dT细胞)。。对于这个样本,使用了来自不相关的非怀孕捐赠者的匹配营养细胞和二叶白细胞或营养细胞和外周血白细胞。所有细胞类型的FACS排序策略见SI附录,图。S8.显微镜图像显示,EVT粘附在纤维质,具有明显、大、扩散的形态,并与多个其他EVT相互作用。此外,在细胞培养中发现具有不同大小和形态的HLA-G+EVT,而VT是均匀的、小的、圆的细胞,不粘附在纤维素上(SI附录,图)。S9A)。光显微镜还显示,在大EVT周围,NK、CD4+和CD8+T细胞的聚类。多个 NK 或 T 细胞可以与一个 EVT 相互作用,无论是在细胞体中,还是在从 EVT 细胞体中扩散出来的类似 filopodia 的结构(SI 附录,图)。S9B)。在任何营养细胞-白细胞共培养中,均未发现EVT细胞解变的迹象。
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基因集富集分析。<br>为了确定反映EVT和VT转录差异的功能差异,我们进行了基因集富集分析(GSEA)。GSEA是一种计算方法,它使用预先定义的一组基因,并确定哪些“功能”基因集是上调的。GSEA软件被用来生成一个功能基因集的列表,这些功能基因集在VT或EVT中的表达量特别高。有趣的是,在EVT中,20个最显著富集的基因集中有14个功能基因集与直接免疫和淋巴细胞活化相关(SI附录,表S2)。这些免疫激活相关途径的核心基因是细胞因子如爱泼斯坦-巴尔病毒诱导的基因-3(EBI3)、肿瘤生长因子β1(TGF-β1)、TGF-β2、IL-8、细胞表面分子CD27 6(B7 H3)和细胞毒性和调节性T细胞分子(CRTAM),它们都能直接影响淋巴细胞结合,是淋巴细胞活化的有效抑制剂(见附录7)。已知EBI3与IL-12(p28)和IL-12(p35)两个α链二聚形成免疫抑制细胞因子IL-27和IL-35(30)。然而,这两个IL-12α链都不是由EVT表达的。EIB3在EVT中的作用以及EBI3能否形成具有未知α链的同型二聚体或对尚待确定。富含VT的功能基因集不太显著(假发现率增加),功能更多样(SI附录,表S3)。<br>EVT与母体白细胞共培养。<br>为了评估在GSEA中显示的EVT显著的免疫激活和调节潜能,我们建立了VT和EVT与所有主要的母细胞亚群(dNK、dMɸ、CD4+和CD8+dT细胞)的共培养。对于这个样本,匹配的滋养层和蜕膜白细胞或滋养层和外周血白细胞来自无关的非妊娠捐献者。所有单元类型的FACS排序策略可在SI附录图S8中找到。显微图像显示EVT与纤维连接蛋白粘附,形态明显、大、分散,并与其他多种EVT相互作用。此外,HLA-G+EVT具有不同的大小和形态,在细胞培养中发现,而VT是不粘附纤维连接蛋白的均质、小而圆的细胞(SI附录,图S9A)。光镜下还显示NK、CD4+、CD8+T细胞在大EVT周围聚集。多个NK或T细胞可以与一个EVT相互作用,无论是在细胞体上还是在从EVT细胞体扩散出来的丝状体结构上(SI附录,图S9B)。在所有滋养层-白细胞共培养中均未观察到EVT的细胞溶解迹象。<br>
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