This method is convenient because i

This method is convenient because it does not require removal of cell culture medium, which can result in loss of detached apoptotic cells (see Figure 1). It also eliminates the need to centrifuge suspension cells before staining. Take care to gently mix the medium immediately after adding Annexin V solution to each sample to avoid uneven staining from transient high local probe concentration, or cell disruption by overly vigorous pipetting. Adding undiluted (50 ug/mL) Annexin V stock solution directly to cells is not recommended.

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该方法很方便，因为它不需要去除细胞培养基，这会导致脱落的凋亡细胞丢失（见图1）。它还消除了在染色前对悬浮细胞进行离心分离的需要。在向每个样品中添加膜联蛋白V溶液后，应立即小心地混合培养基，以避免因瞬时高局部探针浓度而造成不均匀的染色，或因过度用力移液而破坏细胞。不建议将未稀释的（50 ug / mL）Annexin V储备溶液直接添加到细胞中。

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此方法很方便，因为它不需要去除细胞培养基，这可能导致分离凋亡细胞的丢失（参见图 1）。它还消除了在染色前离心悬浮细胞的用内。在将附件五溶液添加到每个样品中后，注意立即轻轻混合介质，以避免瞬时高局部探针浓度不均匀染色，或过度剧烈移液导致细胞中断。不建议将未稀释（50 ug/mL）附件 V 库存溶液直接添加到细胞中。

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这种方法很方便，因为它不需要去除细胞培养基，这会导致分离凋亡细胞的丢失（见图1）。它也消除了在染色前离心悬浮细胞的需要。在向每个样本中添加Annexin V溶液后，应立即小心地混合培养基，以避免由于短暂的局部探针浓度过高而导致染色不均匀，或过度用力的移液管会破坏细胞。不建议直接向细胞中添加未稀释（50 ug/mL）的Annexin V储备液。<br>

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