umor xenograftsFor tumor angiogenesis study, mice aged between 8–12 we的简体中文翻译

umor xenograftsFor tumor angiogenes

umor xenograftsFor tumor angiogenesis study, mice aged between 8–12 weeks were injected with 80 mg per kg (weight) tamoxifen intraperitoneally, once daily for 5 days to induce Cds2 deletion before tumor cell inoculations. Cells were harvested in 100 μl RPMI-1640 or DMEM medium and gently mixed 2:1 (volume ratio) with matrigel (Corning, 356237). Then, mice were inoculated subcutaneously on the lateral flanks with 106 TC-1 cells or 0.5 million B16 cells (150 μl volume per injection). Vernier caliper was used to measure the approximate tumor volume calculated as length × width2/2, and final tumor weight measurements were taken at the termination of the experiments. Subsequently, tumors as well as other organs were harvested for histology analysis.For vessel regression determination, mice were injected with 3 × 106 TC-1 cells or 106 B16 cells (150 μl volume per injection) two days prior to a five-day consecutive injection of tamoxifen, allowing for a robust angiogenic response. Tumors were measured once two days for 25 days or until reaching an average diameter of 1.5 cm, and tumor necrosis was monitored daily during this process. For TC-1 tumors, ultrasound imaging and analysis were performed at day 7, 11 and 15 post-implantation to assess the blood perfusion. Meanwhile, a portion of tumors without necrosis were excised at day 9 or 13 for tumor weight measurements, histology and qRT-PCR analysis. To determine the Vegfa expression in tumor cells, GFP-labeled B16 cells were inoculated as described above. Then day 9 tumors were excised, cut into pieces and digested with collagenase/dispase (Roche, 1 mg ml−1) in DMEM at 37 °C for 30 min. GFP-positive and -negative cells were sorted by FACS to perform qPCR analysis. To pharmacologically inhibit PI3K signaling, BKM120 or BEZ235 dissolved in 10% N-methyl-2-pyrrolidone (NMP) with 90% PEG400 was orally administrated at 40 mg kg−1 daily from day 5 to day 9 after B16 cell inoculation. Then, tumors were excised at day 10 for weight measurement and immunohistochemistry analysis. For vivo morpholino (vMO) administration, Cds2 vMOs (Gene Tools) were administrated at 1 mg kg−1 daily through intravenous injection from day 1 post B16 cell implantation until the experimental termination. Tumor size was measured once two days for 15 days or until reaching size limitation guided by Animal Protocol.
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umor异种移植物<br>对于肿瘤血管生成的研究中,8〜12周龄之间小鼠用80毫克每千克(体重)腹膜内他莫昔芬,每天一次,持续5天,然后肿瘤细胞的接种,以诱导CDS2缺失注入。收获细胞,在100μlRPMI-1640或DMEM培养基中并轻轻混合2:1(体积比)有MATRIGEL(康宁,356237)。然后,将小鼠与106 TC-1细胞或0500000 B16细胞(每次注射150微升体积)的侧翼皮下接种。游标卡尺来测量作为长度×宽度2/2计算出的近似肿瘤体积,并在实验结束取最终肿瘤重量的测量。随后,肿瘤以及其他器官收集用于组织学分析。<br><br>对于血管退化测定,小鼠用3×106 TC-1细胞或106个B16细胞(每次注射150微升体积)之前的他莫昔芬的为期五天的连续注射2天注入,从而允许一个健壮的血管生成反应。一旦两天内测量25天或直到达到为1.5厘米的平均直径肿瘤和肿瘤坏死在此过程中每天监测。对于TC-1肿瘤,超声成像和分析在11第7天,和15植入后进行,以评估血液灌注。同时,肿瘤的无坏死的部分为在肿瘤重量测量,组织学和qRT-PCR分析9天或13切下。为了确定在肿瘤细胞中的表达VEGFA,如上所述接种GFP标记的B16细胞。然后每天9个肿瘤切除,切成片,并在37℃用胶原酶/分散酶(Roche公司,1毫克毫升-1)在DMEM消化30分钟。GFP阳性和阴性细胞通过FACS分选来进行qPCR分析。药理学抑制PI3K信号传导,BKM120或BEZ235溶解在10%的N-甲基-2-吡咯烷酮(NMP)用90%PEG400在从第5天至9每天40毫克KG-1每日B16细胞接种后口服给药。然后,在肿瘤体重测量和免疫组化分析10天切除。对于体内吗啉代(VMO)给药,CDS2 VMOS(基因工具)以1毫克每日KG-1通过从后第1天的B16细胞植入静脉注射给药,直至实验结束。肿瘤大小一次2天测量15天或直至达到由动物协议引导大小限制。GFP阳性和阴性细胞通过FACS分选来进行qPCR分析。药理学抑制PI3K信号传导,BKM120或BEZ235溶解在10%的N-甲基-2-吡咯烷酮(NMP)用90%PEG400在从第5天至9每天40毫克KG-1每日B16细胞接种后口服给药。然后,在肿瘤体重测量和免疫组化分析10天切除。对于体内吗啉代(VMO)给药,CDS2 VMOS(基因工具)以1毫克每日KG-1通过从后第1天的B16细胞植入静脉注射给药,直至实验结束。肿瘤大小一次2天测量15天或直至达到由动物协议引导大小限制。GFP阳性和阴性细胞通过FACS分选来进行qPCR分析。药理学抑制PI3K信号传导,BKM120或BEZ235溶解在10%的N-甲基-2-吡咯烷酮(NMP)用90%PEG400在从第5天至9每天40毫克KG-1每日B16细胞接种后口服给药。然后,在肿瘤体重测量和免疫组化分析10天切除。对于体内吗啉代(VMO)给药,CDS2 VMOS(基因工具)以1毫克每日KG-1通过从后第1天的B16细胞植入静脉注射给药,直至实验结束。肿瘤大小一次2天测量15天或直至达到由动物协议引导大小限制。BKM120或BEZ235溶解在10%的N-甲基-2-吡咯烷酮(NMP)用90%PEG400在从第5天40毫克KG-1每日B16细胞接种后口服给药至9一天。然后,在肿瘤体重测量和免疫组化分析10天切除。对于体内吗啉代(VMO)给药,CDS2 VMOS(基因工具)以1毫克每日KG-1通过从后第1天的B16细胞植入静脉注射给药,直至实验结束。肿瘤大小一次2天测量15天或直至达到由动物协议引导大小限制。BKM120或BEZ235溶解在10%的N-甲基-2-吡咯烷酮(NMP)用90%PEG400在从第5天40毫克KG-1每日B16细胞接种后口服给药至9一天。然后,在肿瘤体重测量和免疫组化分析10天切除。对于体内吗啉代(VMO)给药,CDS2 VMOS(基因工具)以1毫克每日KG-1通过从后第1天的B16细胞植入静脉注射给药,直至实验结束。肿瘤大小一次2天测量15天或直至达到由动物协议引导大小限制。CDS2 VMOS(基因工具)在被施用1毫克KG-1每日通过从后第1天的B16细胞植入静脉注射,直到实验结束。肿瘤大小一次2天测量15天或直至达到由动物协议引导大小限制。CDS2 VMOS(基因工具)在被施用1毫克KG-1每日通过从后第1天的B16细胞植入静脉注射,直到实验结束。肿瘤大小一次2天测量15天或直至达到由动物协议引导大小限制。
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乌莫异种移植物<br>在肿瘤血管生成研究中,在8-12周之间的小鼠在腹肌内注射80毫克/千克(重量)他莫西芬,每天一次,每次5天,在肿瘤细胞接种前诱导Cds2缺失。细胞在100μl RPMI-1640或DMEM培养基中收获,与母粒醇(康宁,356237)轻轻混合2:1(体积比)。然后,小鼠在侧侧侧侧侧接种,有106个TC-1细胞或50万个B16细胞(每次注射150μl体积)。Vernier 卡钳用于测量以长度 = 宽度 2⁄2 计算的近似肿瘤体积,并在实验结束时进行了最终肿瘤重量测量。随后,肿瘤和其他器官被采集为组织学分析。<br><br>对于血管回归测定,小鼠在连续注射他莫西芬前两天注射3×106 TC-1细胞或106个B16细胞(每次注射150μl体积),从而产生强健的血管生成反应。肿瘤测量一次两天25天或直到达到平均直径1.5厘米,肿瘤坏死每天监测在此期间。对于TC-1肿瘤,在植入后的第7天、第11天和第15天进行超声波成像和分析,以评估血液灌注。同时,在第9天或第13天切除了部分无坏死肿瘤,用于肿瘤体重测量、组织学和qRT-PCR分析。为了确定肿瘤细胞中的Vegfa表达,如上文所述,接种了GFP标记的B16细胞。然后,第9天肿瘤被切除,切成片,用胶原酶/消血酶(罗氏,1mg ml-1)在DMEM中消化30分钟。 GFP阳性和阴性细胞被FACS分类,以执行qPCR分析。为了在药理上抑制PI3K信号,BKM120或BEZ235溶解在10%N-甲基-2-丙酮(NMP)与90%PEG400口服在40毫克kg+1每天从B16细胞接种后第5天至第9天。然后,肿瘤在第10天被切除,用于体重测量和免疫性化学分析。对于活体形态(vMO)管理,Cds2 vMo(基因工具)每天通过静脉注射以1mg kg+1进行管理,从第1天开始,B16细胞植入直到实验终止。肿瘤大小测量一次两天15天或直到达到大小限制由动物协议指导。
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异种移植瘤<br>为肿瘤血管生成研究,在8至12周龄的小鼠腹腔注射80毫克mg(重量)他莫昔芬,每天一次,持续5天,在肿瘤细胞接种前诱导CDS2的缺失。在100μl RPMI-1640或DMEM培养基中采集细胞,与基质凝胶(Corning,356237)2:1(体积比)轻轻混合。然后,在小鼠侧腹皮下接种106个TC-1细胞或50万个B16细胞(每次注射150μl体积)。用游标卡尺测量长度为γ2宽度/ 2的肿瘤体积,并在实验结束时进行最终的肿瘤重量测量。随后,采集肿瘤及其他器官进行组织学分析。<br>对于血管回归测定,小鼠在注射五天三苯氧胺前两天注射3×106 TC-1细胞或106个B16细胞(每注射150μl体积),允许一个强大的血管生成反应。两天一次,持续25天,直至肿瘤平均直径达到1.5 cm,在此过程中每天监测肿瘤坏死情况。对于TC-1肿瘤,在植入后第7、11和15天进行超声显像和分析,以评估血液灌注。同时,在第9天或第13天切除一部分无坏死的肿瘤,进行肿瘤重量测量、组织学和qRT-PCR分析。为了检测Vegfa在肿瘤细胞中的表达,将GFP标记的B16细胞按上述方法接种。第9天切除肿瘤,切片,37°C下用胶原酶/脱氨酶(Roche,1 mg ml 1)在DMEM中消化30 min,用流式细胞仪对GFP阳性和阴性细胞进行qPCR分析。为抑制PI3K信号传导,B16细胞接种后第5天至第9天,将溶于10%N-甲基-2-吡咯烷酮(NMP)和90%PEG400的bkm20或BEZ235口服于40 mg kg−1。然后在第10天切除肿瘤进行体重测量和免疫组化分析。对于活体吗啉(vMO)给药,从B16细胞植入后第1天起,通过静脉注射,每天给药1 mg kg−1。在动物实验的指导下,每两天测量一次肿瘤大小,持续15天或直到达到大小限制。
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