The agar diffusion test method applied by Anejaand Joshi [20] was used的简体中文翻译

The agar diffusion test method appl

The agar diffusion test method applied by Anejaand Joshi [20] was used to observe theantimicrobial activity of both oil and ethanolicextract. The microbial suspension were swabbedand spread on nutrient agar. The plates werecultured in 0.1 mL (105-106cells/mL) andsubsequently 8 mm wide wells were bored withinthese agar plates using a sterile cork borer. Theeach wells were aseptically filled with 100 μL ofethanolic extract (250, 500 and 1000 μg/mL) and20 μL of essential oil was placed on theinoculated agar. The plates were incubatedovernight at 37 oC for bacteria and at 20-22 oCfor 5 days for yeast cultures. Microbial growthwas determined by measuring the diameter ofzone of inhibition. For each strain, a negativecontrol was maintained where DMSO was usedin place of extract. In order to determine thesensitivity of gram negative and gram positivebacteria, Gentamycin (20 g/disc) was chosen asstandard, while Nystatin (50 g/disc) was selectedas Standard for yeasts (Table 2). Eachexperiment was carried out three times andmean values are presented.Minimum ınhibitory concentration (MIC)assayTube dilution method was used to determine MICof the extracts. The essential oil and extract ofCyperus fuscus were dissolved in 10 %dimethylsulfoxide (DMSO). The highestconcentration (1000 μg/mL) was prepared at thebeginning. Then serial two-fold dilutions wereprepared resulting the concentrations rangingfrom 31.25 to 1000 μg/mL in 15 mL sterile testtubes containing nutrient broth and 100 µL of thebacterial suspension containing 108 CFU/mL ofrespective test organisms. The tubes wereincubated at 37 ºC in an incubator for 24 h forbacteria and 22 oC for 48 h for yeast. A tubecontaining nutrient broth without extract wasused as control. The least extract concentrationinhibiting the growth of the test organisms wasconsidered as MIC (Table 2).Statistical analysisA completely randomized experimental designwas used with three replications in factorialarrangements. One-way analysis of variance wasalso used. Tukey HSD multiple comparison testswere used to find out which group originated thedifference between the groups. The normalityassumption in the analyses was tested byKolmogorov-Smirnov test. Statistical analyseswere performed using SPSS (Version 20.0,SPSS Inc, USA) statistical package program. Inthe analyses, significance level was set at p <0.05.
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所述琼脂扩散试验法涂布由Aneja <br>和乔希[20]被用来观察<br>油和乙醇的抗微生物活性<br>的提取物。微生物悬浮液擦拭<br>并散布在营养琼脂。将板<br>在0.1毫升(105培养<br>-106 <br>个细胞/ mL),并<br>随后8mm宽孔中钻出<br>使用无菌木塞打孔器这些琼脂平板上。的<br>每个孔中无菌填充用100μL的<br>乙醇提取物(250,500和1000微克/毫升)和<br>精油的20μL放置在<br>接种的琼脂上。将板孵育<br>在37℃过夜的细菌和在20-22摄氏度<br>5天用于酵母培养物。微生物生长<br>通过测量的直径决定<br>抑制区。对于每个菌株,负<br>控制保持在那里使用DMSO <br>代替提取物。为了确定所述<br>革兰氏阴性的灵敏度和革兰氏阳性<br>菌,庆大霉素(20克/片)被选为<br>标准,而制霉菌素(50克/片)被选择<br>作为标准酵母(表2)。每个<br>实验重复进行三次<br>的平均值呈现。<br>最小抑制浓度(MIC)<br>测定<br>用试管稀释法,以确定MIC <br>的提取物。的精油和提取物<br>褐穗莎草溶于10%<br>二甲亚砜(DMSO)。最高<br>浓度(1000微克/毫升),在准备好的<br>开端。然后分别连续两倍稀释<br>制备得到的浓度范围<br>在15个毫升无菌测试从31.25至1000微克/毫升<br>含有营养肉汤和100μL所述的管<br>含有的10 8 CFU / mL的细菌悬浮液<br>各自的测试生物体。将管<br>在37℃的培养箱中温育24小时<br>的细菌和22℃达用于酵母48小时。的管<br>含没有浸出物营养肉汤<br>用作对照。所述至少提取物的浓度<br>抑制测试生物体的生长被<br>认为是MIC(表2)。<br>统计分析<br>完全随机实验设计<br>与在阶乘三次重复使用<br>安排。是方差的单向分析<br>也可使用。杜克HSD多重比较测试<br>被用来找出哪个组发起<br>组间差异。常态<br>在分析中假设是由测试<br>Kolmogorov-Smirnov检验。统计学分析<br>使用SPSS(20.0版,进行<br>SPSS公司,USA)统计软件包程序。在<br>该分析中,显着性水平设置为p < <br>0.05。
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阿内哈应用的琼脂扩散试验方法<br>和乔希[20]被用来观察<br>油和乙醇的抗菌活性<br>提取。微生物悬浮液被擦拭<br>并在营养琼脂上传播。板块是<br>培养在 0.1 mL (105<br>-106<br>细胞/mL)和<br>随后8毫米宽的井无聊内<br>这些琼脂板使用无菌软木孔。的<br>每口井都无菌地填充了100 μL<br>乙醇提取物(250、500和1000 μg/mL)和<br>20 μL 精油被放置在<br>接种琼脂。盘子被孵化了<br>过夜在37°C细菌和在20-22 oC<br>酵母培养物5天。微生物生长<br>通过测量直径确定的<br>抑制区。对于每个菌株,负<br>控制在使用 DMSO 时保持<br>代替提取物。为了确定<br>克阴性和克阳性的敏感性<br>细菌,根他霉素(20克/盘)被选为<br>标准,而尼他汀(50克/盘)被选中<br>作为酵母的标准(表2)。每个<br>实验进行了三次,<br>表示平均值。<br>最低浓度<br>测定<br>用管稀释法测定MIC<br>摘录。精油和提取物<br>Cyperus fuscus 溶解在 10%<br>二甲基硫氧化物(DMSO)。最高<br>浓度(1000微克/mL)在<br>开始。然后串行双倍稀释<br>准备的结果浓度范围<br>在 15 mL 无菌测试中从 31.25 到 1000 μg/mL<br>含有营养汤和100μL的管<br>含有108 CFU/mL的细菌悬浮液<br>各自的测试生物体。管<br>在孵化器中孵育37oC,孵育24小时<br>细菌和22 oC48小时酵母。管<br>含有营养汤没有提取物<br>用作控件。提取物浓度最低<br>抑制试验生物的生长<br>被视为 MIC(表 2)。<br>统计分析<br>完全随机的实验设计<br>在因子中与三个复制一起使用<br>安排。方差的单向分析是<br>也使用。图基 HSD 多个比较测试<br>用于找出哪个组起源于<br>组之间的差异。正常性<br>在分析中的假设被测试<br>科尔莫戈罗夫-斯米尔诺夫测试。统计分析<br>使用 SPSS(版本 20.0、<br>SPSS公司,美国)统计包计划。在<br>分析,显著性水平被设置为 p |<br>0.05.
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结果 (简体中文) 3:[复制]
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阿尼加琼脂扩散试验法<br>乔希被用来观察<br>油和乙醇的抗菌活性<br>提取。将微生物悬液擦干<br>撒在营养琼脂上。这些盘子是<br>培养于0.1毫升(105<br>-106个<br>细胞/mL)和<br>随后,在<br>这些琼脂板使用无菌的钻木塞。这个<br>每孔无菌填充100μL<br>乙醇提取物(250、500和1000μg/mL)和<br>将20μL精油放在<br>接种琼脂。这些盘子是孵育的<br>细菌在37℃和20-22℃下过夜<br>酵母培养5天。微生物生长<br>是通过测量<br>抑制区。对于每种菌株,一个阴性<br>在使用DMSO的地方保持对照<br>代替提取物。为了确定<br>革兰阴性和革兰阳性的敏感性<br>细菌,庆大霉素(20 g/盘)被选为<br>标准,同时选择制霉菌素(50g/片)<br>作为酵母的标准(表2)。每个<br>实验进行了三次<br>给出了平均值。<br>最低允许浓度(MIC)<br>化验<br>用试管稀释法测定MIC<br>提取物。香精油及其提取物<br>香附溶于10%<br>二甲基亚砜(DMSO)。最高的<br>浓度(1000μg/mL)制备于<br>开始。然后连续两次稀释<br>制备结果浓度范围<br>15ml无菌试验,31.25~1000μg/mL<br>含有营养肉汤和100微升<br>含108 CFU/mL<br>各自的试验生物。管子是<br>在37℃的培养箱中培养24小时<br>细菌和22℃培养48小时的酵母。管子<br>不含提取物的营养液<br>用作控制。最低提取浓度<br>抑制试验生物的生长<br>被认为是麦克风(表2)。<br>统计分析<br>完全随机实验设计<br>在因子分析中与三个复制品一起使用<br>安排。单因素方差分析<br>也被使用。Tukey HSD多重比较试验<br>用来找出是哪一组<br>两组之间的差异。常态<br>分析中的假设通过<br>Kolmogorov-Smirnov检验。统计分析<br>使用SPSS(版本20.0,<br>美国SPSS公司)统计软件包项目。在<br>分析,显著性水平设为p
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