Cell culture assaysMouse epithelial LL/2 (LLC1) and mouse macrophages 的繁体中文翻译

Cell culture assaysMouse epithelial

Cell culture assaysMouse epithelial LL/2 (LLC1) and mouse macrophages J774 cell lines were grown in Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM) (Gibco) supplemented with 10% fetal bovine serum (FBS) (Gibco) at 37 °C with 5% CO2. Adhesion experiments were performed as described by [8]. Bacterial adherence to the LL/2 cells was expressed as a percentage of the CFU of adhered bacteria compared tothe total number of CFUs of the initial inoculum. For the opsonophagocytic killing assay, mouse macrophages J774 were stimulated with 40 ng/ml E. coli LPS (Sigma-Aldrich) for 3 days. Macrophages (1 × 105 cells/ well) and A. baumannii strains (1 × 104 CFU/well) were added into the wells along with the heat-treated mice serum (56 °C for 40 min for the inactivation of complement components) at the final dilution of 1:200. After 1h incubation, the samples were serially diluted and seeded. Serum killing rates were counted by comparing the number of the reduced CFUs with those observed using naïve serum. A cytotoxicity assay was performed by incubating LL/2 cells with recombinant Blp1 C-terminal fragment in DMEM supplemented with 10% FBS at 37 °C for 24 h. Then, 20 μl of MTS (Promega) solution was added to the wells and cells were incubated for 4 h at 37 °C. After incubation, OD490 was determined. The proliferationrate was counted by comparing OD490 values for Blp1 C-terminus fragment-treated and non-treated cells.
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細胞培養測定<br>小鼠上皮LL / 2(LLC1)和小鼠巨噬細胞J774細胞系在補充了10%胎牛血清(FBS)(Gibco)和5%5%胎牛血清的Dulbecco改良Eagle培養基(DMEM)(Gibco)中生長二氧化碳 如[8]所述進行粘附實驗。細菌對LL / 2細胞的粘附表示為粘附細菌CFU的百分比,與<br>初始接種物的CFU總數。對於調理吞噬細胞的殺傷試驗,用40 ng / ml大腸桿菌LPS(Sigma-Aldrich)刺激小鼠巨噬細胞J774 3天。將巨噬細胞(1×105細胞/孔)和鮑曼不動桿菌菌株(1×104 CFU /孔)與經熱處理的小鼠血清(56°C 40分鐘用於補體成分的滅活)一起添加到孔中。最終稀釋度為1:200。溫育1小時後,將樣品連續稀釋並接種。通過比較降低的CFU數與使用純血清觀察到的CFU數來計算血清殺死率。通過將LL / 2細胞與重組Blp1 C末端片段在補充有10%FBS的DMEM中於37°C孵育24 h,進行細胞毒性測定。然後,將20μlMTS(Promega)溶液添加至孔中,並將細胞在37°C下孵育4小時。孵育後,測定OD490。擴散<br>通過比較Blp1 C末端片段處理和未處理細胞的OD490值來計算細胞的比率。
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細胞培養測定。<br>小鼠上皮 LL/2 (LLC1) 和小鼠巨噬細胞 J774 細胞系生長在杜爾貝科的改良鷹的培養基 (DMEM) (Gibco) 中,並在 37 °C 下補充 10% 的胎兒牛血清 (FBS) (Gibco),CO2為 5%。粘附實驗按[8]所述進行。與。<br>初始孵化的 CCU 總數。對於蛋白石細胞殺死測定,小鼠巨噬細胞J774被刺激與40納克/毫升大腸桿菌LPS(西格瑪-奧爾德里希)3天。在1:200的最終稀釋中,將巨噬細胞(1×105個細胞/孔)和A.baumannii菌株(1×104 CFU/孔)與熱處理小鼠血清(56°C,補充成分的滅活40分鐘)一起加入到井中。經過1小時孵育,樣品被連續稀釋和播種。血清殺菌率通過將減少的C比與使用天真血清觀察到的C比數量進行比較來計算。細胞毒性測定通過孵化DLP/2細胞在DMEM中重組Blp1 C-終端片段,在37°C下以10%FBS進行24小時。然後,將20μl的MTS(Promega)溶液添加到井中,在37°C下孵育4小時。 孵育後,確定OD490。擴散。<br>通過比較Blp1 C-術語片段處理和非處理細胞的OD490值來計算速率。
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細胞培養試驗<br>小鼠上皮細胞LL/2(LLC1)和小鼠巨噬細胞J774細胞系在杜爾貝科改良的鷹氏培養基(DMEM)(Gibco)中生長,培養溫度為37℃,CO2濃度為5%。按照[8]所述進行粘附實驗。細菌對LL/2細胞的粘附以粘附細菌CFU的百分比表示,與<br>初始接種物的菌落總數。用40 ng/ml大腸桿菌脂多糖(Sigma-Aldrich)刺激小鼠巨噬細胞J774,持續3天。將巨噬細胞(1×105個細胞/孔)和鮑曼氏A.菌株(1×104 CFU/孔)與熱處理小鼠血清(56℃40分鐘,補體成分失活)一起加入孔中,最終稀釋度為1:200。培養1h後,連續稀釋並播種。通過比較减少的cfu數和用未經處理的血清觀察到的cfu數,計算血清殺傷率。細胞毒性試驗:將重組Blp1 C端片段的LL/2細胞置於37℃下添加10%FBS的DMEM中培養24小時,然後向孔中加入20μl MTS(Promega)溶液,在37℃下培養4 h。孵育後,測定OD490。擴散<br>通過比較Blp1 C末端片段處理和未處理細胞的OD490值來計算比率。<br>
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